ขอขอบคุณที่เยี่ยมชม Nature.comคุณกำลังใช้เวอร์ชันเบราว์เซอร์ที่มีการรองรับ CSS แบบจำกัดเพื่อประสบการณ์ที่ดีที่สุด เราขอแนะนำให้คุณใช้เบราว์เซอร์ที่อัปเดต (หรือปิดใช้งานโหมดความเข้ากันได้ใน Internet Explorer)นอกจากนี้ เพื่อให้มั่นใจว่าได้รับการสนับสนุนอย่างต่อเนื่อง เราจะแสดงไซต์โดยไม่มีสไตล์และ JavaScript
แสดงภาพหมุนสามสไลด์พร้อมกันใช้ปุ่มก่อนหน้าและถัดไปเพื่อเลื่อนผ่านสามสไลด์ในแต่ละครั้ง หรือใช้ปุ่มแถบเลื่อนที่ส่วนท้ายเพื่อเลื่อนผ่านสามสไลด์ในแต่ละครั้ง
การกัดกร่อนของจุลินทรีย์ (MIC) เป็นปัญหาสำคัญในหลายอุตสาหกรรม เนื่องจากสามารถนำไปสู่การสูญเสียทางเศรษฐกิจอย่างมหาศาลเหล็กกล้าไร้สนิมซุปเปอร์ดูเพล็กซ์ 2707 (2707 HDSS) ใช้ในสภาพแวดล้อมทางทะเลเนื่องจากมีความทนทานต่อสารเคมีที่ดีเยี่ยมอย่างไรก็ตาม ยังไม่มีการทดลองแสดงการต้านทานต่อ MICการศึกษานี้ตรวจสอบพฤติกรรมของ MIC 2707 HDSS ที่เกิดจากแบคทีเรียแอโรบิกในทะเล Pseudomonas aeruginosaการวิเคราะห์ทางเคมีไฟฟ้าแสดงให้เห็นว่าเมื่อมีฟิล์มชีวะ Pseudomonas aeruginosa ในตัวกลาง 2216E ศักยภาพในการกัดกร่อนเปลี่ยนไปในทางบวก และความหนาแน่นกระแสการกัดกร่อนก็เพิ่มขึ้นผลการวิเคราะห์ด้วยเอ็กซ์เรย์โฟโตอิเล็กตรอนสเปกโทรสโกปี (XPS) แสดงให้เห็นว่าปริมาณ Cr บนพื้นผิวตัวอย่างใต้แผ่นชีวะลดลงการวิเคราะห์ภาพหลุมแสดงให้เห็นว่าแผ่นชีวะของ Pseudomonas aeruginosa สร้างความลึกของหลุมสูงสุดที่ 0.69 µm หลังจากการเพาะเลี้ยง 14 วันแม้ว่าจะมีขนาดเล็ก แต่ก็ชี้ให้เห็นว่า 2707 HDSS ไม่ได้รับการยกเว้นอย่างสมบูรณ์ต่อผลกระทบของแผ่นชีวะของ P. aeruginosa บน MIC
เหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ (DSS) ถูกนำมาใช้กันอย่างแพร่หลายในอุตสาหกรรมต่างๆ เนื่องจากมีการผสมผสานที่ลงตัวระหว่างคุณสมบัติทางกลที่ดีเยี่ยมและความต้านทานการกัดกร่อน1,2อย่างไรก็ตาม อาจเกิดรูพรุนเฉพาะที่ ซึ่งอาจส่งผลต่อความสมบูรณ์ของเหล็กนี้ 3, 4DSS ไม่ได้รับการปกป้องจากการกัดกร่อนของจุลินทรีย์ (MIC)5,6แม้ว่าขอบเขตการใช้งานของ DSS จะกว้างมาก แต่ก็ยังมีสภาพแวดล้อมที่ความต้านทานการกัดกร่อนของ DSS ไม่เพียงพอสำหรับการใช้งานในระยะยาวซึ่งหมายความว่าจำเป็นต้องใช้วัสดุที่มีราคาแพงกว่าและมีความต้านทานการกัดกร่อนสูงกว่าJeon และคณะ 7 พบว่าแม้แต่เหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์ (SDSS) ก็มีข้อจำกัดบางประการในแง่ของความต้านทานการกัดกร่อนดังนั้นจึงจำเป็นต้องมีเหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์ (HDSS) ที่มีความต้านทานการกัดกร่อนสูงกว่าในการใช้งานบางอย่างสิ่งนี้นำไปสู่การพัฒนา HDSS ที่มีอัลลอยด์สูง
ความต้านทานการกัดกร่อนของ DSS ถูกกำหนดโดยอัตราส่วนของเฟส α ต่อ γ เฟส และพื้นที่ที่หมดไปใน Cr, Mo และ W ที่อยู่ติดกับเฟสทุติยภูมิ8,9,10HDSS มีปริมาณ Cr, Mo และ N11 สูง ซึ่งให้ความต้านทานการกัดกร่อนที่ดีเยี่ยม และค่าความต้านทานการเกิดหลุม (PREN) เทียบเท่ากับค่าสูง (45-50) ซึ่งกำหนดโดย wt.% Cr + 3.3 (wt.% Mo + 0, 5 โดยน้ำหนัก % W) + 16 โดยน้ำหนัก %น12.ความต้านทานการกัดกร่อนที่ดีเยี่ยมขึ้นอยู่กับองค์ประกอบที่สมดุลซึ่งมีเฟสเฟอร์ริติก (α) ประมาณ 50% และออสเทนนิติก (γ) 50%HDSS มีการปรับปรุงคุณสมบัติทางกลและต้านทานคลอรีนได้สูงขึ้นเมื่อเปรียบเทียบกับ DSS13 ทั่วไปลักษณะของการกัดกร่อนของสารเคมีความต้านทานการกัดกร่อนที่ได้รับการปรับปรุงช่วยขยายการใช้ HDSS ในสภาพแวดล้อมที่มีคลอไรด์ที่รุนแรงมากขึ้น เช่น สภาพแวดล้อมทางทะเล
MIC เป็นปัญหาสำคัญในหลายอุตสาหกรรม รวมถึงน้ำมันและก๊าซ และการจัดหาน้ำ14MIC คิดเป็น 20% ของความเสียหายจากการกัดกร่อนทั้งหมด15MIC คือการกัดกร่อนทางเคมีไฟฟ้าชีวภาพที่สามารถสังเกตได้ในหลายสภาพแวดล้อม16การก่อตัวของแผ่นชีวะบนพื้นผิวโลหะจะเปลี่ยนสภาวะทางเคมีไฟฟ้า และส่งผลต่อกระบวนการกัดกร่อนเป็นที่ยอมรับกันโดยทั่วไปว่าการกัดกร่อนของ MIC เกิดจากแผ่นชีวะ14จุลินทรีย์ที่ใช้พลังงานไฟฟ้าจะกินโลหะเพื่อให้ได้พลังงานเพื่อความอยู่รอด17การศึกษา MIC ล่าสุดแสดงให้เห็นว่า EET (การถ่ายโอนอิเล็กตรอนนอกเซลล์) เป็นปัจจัยจำกัดสำหรับ MIC ที่เกิดจากจุลินทรีย์ที่เป็นไฟฟ้าZhang และคณะ แสดงให้เห็นว่าผู้ไกล่เกลี่ยอิเล็กตรอนเร่งการถ่ายโอนอิเล็กตรอนระหว่างเซลล์เซสไซล์ Desulfovibrio vulgaris และเหล็กกล้าไร้สนิม 304 ส่งผลให้เกิดการโจมตี MIC ที่รุนแรงยิ่งขึ้นแอนนิ่ง และคณะ19 และเวนซลาฟฟ์ และคณะฉบับที่ 20 ได้แสดงให้เห็นว่าแผ่นชีวะของแบคทีเรียลดซัลเฟตที่มีฤทธิ์กัดกร่อน (SRB) สามารถดูดซับอิเล็กตรอนได้โดยตรงจากพื้นผิวโลหะ ส่งผลให้เกิดรูพรุนอย่างรุนแรง
เป็นที่ทราบกันว่า DSS มีความไวต่อ MIC ในสื่อที่มี SRB, แบคทีเรียลดธาตุเหล็ก (IRB) ฯลฯ 21แบคทีเรียเหล่านี้ทำให้เกิดรูพรุนเฉพาะจุดบนพื้นผิวของ DSS ใต้แผ่นชีวะ22,23ต่างจาก DSS ตรงที่ไม่ค่อยมีใครรู้จัก MIC HDSS24
Pseudomonas aeruginosa เป็นแบคทีเรียรูปแท่งแกรมลบ เคลื่อนที่ได้ และมีการกระจายอย่างกว้างขวางในธรรมชาติPseudomonas aeruginosa ยังเป็นจุลินทรีย์หลักที่รับผิดชอบ MIC ของเหล็กในสภาพแวดล้อมทางทะเลสายพันธุ์ Pseudomonas เกี่ยวข้องโดยตรงกับกระบวนการกัดกร่อนและได้รับการยอมรับว่าเป็นอาณานิคมกลุ่มแรกในระหว่างการก่อตัวของฟิล์มชีวะมหาต และคณะ28 และหยวน และคณะฉบับที่ 29 แสดงให้เห็นว่า Pseudomonas aeruginosa มีแนวโน้มที่จะเพิ่มอัตราการกัดกร่อนของเหล็กเหนียวและโลหะผสมในสภาพแวดล้อมทางน้ำ
เป้าหมายหลักของงานนี้คือเพื่อศึกษาคุณสมบัติ MIC ของ 2707 HDSS ที่เกิดจากแบคทีเรียแอโรบิกในทะเล Pseudomonas aeruginosa โดยใช้วิธีเคมีไฟฟ้า วิธีวิเคราะห์พื้นผิว และการวิเคราะห์ผลิตภัณฑ์การกัดกร่อนการศึกษาเคมีไฟฟ้ารวมถึงศักย์ไฟฟ้าของวงจรเปิด (OCP) ความต้านทานโพลาไรเซชันเชิงเส้น (LPR) สเปกโทรสโกปีอิมพีแดนซ์เคมีไฟฟ้า (EIS) และโพลาไรซ์ศักย์ไดนามิกได้ดำเนินการเพื่อศึกษาพฤติกรรมของ MIC 2707 HDSSการวิเคราะห์การกระจายพลังงานสเปกโทรสโกปี (EDS) ดำเนินการเพื่อตรวจจับองค์ประกอบทางเคมีบนพื้นผิวที่สึกกร่อนนอกจากนี้ ความเสถียรของการสร้างฟิล์มออกไซด์ภายใต้อิทธิพลของสภาพแวดล้อมทางทะเลที่มี Pseudomonas aeruginosa ถูกกำหนดโดย X-ray photoelectron spectroscopy (XPS)วัดความลึกของหลุมด้วยกล้องจุลทรรศน์เลเซอร์สแกนแบบคอนโฟคอล (CLSM)
ตารางที่ 1 แสดงองค์ประกอบทางเคมีของ 2707 HDSSตารางที่ 2 แสดงให้เห็นว่า 2707 HDSS มีคุณสมบัติเชิงกลที่ดีเยี่ยมด้วยความแข็งแรงของผลผลิตที่ 650 MPaบนรูปภาพที่ 1 แสดงโครงสร้างจุลภาคเชิงแสงของสารละลาย 2707 HDSS ที่ได้รับความร้อนแถบยาวของเฟสออสเทนนิติกและเฟอร์ริติกที่ไม่มีเฟสทุติยภูมิสามารถเห็นได้ในโครงสร้างจุลภาคที่มีเฟสออสเทนนิติกประมาณ 50% และเฟสเฟอร์ริติก 50%
บนรูป2a แสดงศักยภาพของวงจรเปิด (Eocp) เทียบกับเวลาเปิดรับแสงสำหรับ 2707 HDSS ในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีชีวิต 2216E และน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa เป็นเวลา 14 วันที่ 37°Cพบว่าการเปลี่ยนแปลง Eocp ที่เด่นชัดที่สุดเกิดขึ้นในช่วง 24 ชั่วโมงแรกค่า Eocp ในทั้งสองกรณีจะถึงจุดสูงสุดที่ประมาณ -145 mV (เทียบกับ SCE) ที่เวลาประมาณ 16 ชั่วโมง จากนั้นลดลงอย่างรวดเร็วเป็น -477 mV (เทียบกับ SCE) และ -236 mV (เทียบกับ SCE) สำหรับตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพและ P สำหรับญาติ SCE) ใบคราบ ตามลำดับหลังจากผ่านไป 24 ชั่วโมง ค่า Eocp ของ Pseudomonas aeruginosa 2707 HDSS ยังคงค่อนข้างคงที่ที่ -228 มิลลิโวลต์ (เทียบกับ SCE) ในขณะที่ค่าที่สอดคล้องกันสำหรับตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพอยู่ที่ประมาณ -442 มิลลิโวลต์ (เมื่อเทียบกับ SCE)Eocp ต่อหน้า Pseudomonas aeruginosa ค่อนข้างต่ำ
การทดสอบเคมีไฟฟ้าของตัวอย่าง HDSS 2707 ตัวอย่างในตัวกลางที่ไม่มีชีวิตและน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa ที่อุณหภูมิ 37°C:
(a) การเปลี่ยนแปลงใน Eocp พร้อมเวลาเปิดรับแสง (b) เส้นโค้งโพลาไรเซชัน ณ วันที่ 14 (c) การเปลี่ยนแปลงใน Rp พร้อมเวลาเปิดรับแสง (d) การเปลี่ยนแปลงตามเวลาเปิดรับแสง
ตารางที่ 3 แสดงพารามิเตอร์การกัดกร่อนทางเคมีไฟฟ้าของตัวอย่าง HDSS 2,707 ตัวอย่างที่สัมผัสกับอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีชีวิตและเชื้อ P. aeruginosa ในช่วงเวลา 14 วันการอนุมานเชิงสัมผัสของเส้นโค้งขั้วบวกและแคโทดไปยังจุดตัดทำให้สามารถกำหนดความหนาแน่นกระแสการกัดกร่อน (icorr) ศักยภาพในการกัดกร่อน (Ecorr) และความชันของ Tafel (βα และ βc) ตามวิธีมาตรฐาน
ดังที่แสดงในรูปที่ 2b การเลื่อนขึ้นของเส้นโค้ง P. aeruginosa ส่งผลให้ Ecorr เพิ่มขึ้นเมื่อเปรียบเทียบกับเส้นโค้ง abioticค่า icorr ของตัวอย่างที่มี Pseudomonas aeruginosa ตามสัดส่วนของอัตราการกัดกร่อน เพิ่มขึ้นเป็น 0.328 µA cm-2 ซึ่งมากกว่าค่าของตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพถึงสี่เท่า (0.087 µA cm-2)
LPR เป็นวิธีเคมีไฟฟ้าแบบคลาสสิกสำหรับการวิเคราะห์การกัดกร่อนแบบด่วนโดยไม่ทำลายมันยังถูกใช้ในการศึกษา MIC32 ด้วยบนรูป2c แสดงการเปลี่ยนแปลงของความต้านทานโพลาไรเซชัน (Rp) ขึ้นอยู่กับเวลาเปิดรับแสงค่า Rp ที่สูงขึ้นหมายถึงการกัดกร่อนน้อยลงภายใน 24 ชั่วโมงแรก HDSS มีมูลค่า Rp 2,707 สูงสุดถึง 1,955 kΩ cm2 สำหรับตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ และ 1,429 kΩ cm2 สำหรับตัวอย่าง Pseudomonas aeruginosaรูปที่ 2c ยังแสดงให้เห็นว่าค่า Rp ลดลงอย่างรวดเร็วหลังจากผ่านไปหนึ่งวัน และยังคงไม่เปลี่ยนแปลงค่อนข้างมากในช่วง 13 วันข้างหน้าค่า Rp สำหรับชิ้นงานทดสอบ Pseudomonas aeruginosa อยู่ที่ประมาณ 40 kΩ cm2 ซึ่งต่ำกว่าค่า 450 kΩ cm2 สำหรับชิ้นงานทดสอบที่ไม่ใช่ทางชีวภาพมาก
ค่าของ icorr แปรผันตามอัตราการกัดกร่อนสม่ำเสมอค่าของมันสามารถคำนวณได้จากสมการสเติร์น-กิริต่อไปนี้:
ตามที่ Zoe และคณะ33 ความชัน Tafel B ถูกใช้เป็นค่าทั่วไปที่ 26 mV/dec ในงานนี้บนรูปในรูปที่ 2 แสดงให้เห็นว่า icorr ของสายพันธุ์อะไบโอติก 2707 ยังคงค่อนข้างคงที่ ในขณะที่ icorr ของแถบ Pseudomonas aeruginosa มีความผันผวนอย่างรุนแรงโดยมีการกระโดดครั้งใหญ่หลังจาก 24 ชั่วโมงแรกค่า icorr ของตัวอย่างทดสอบ Pseudomonas aeruginosa มีลำดับความสำคัญสูงกว่าค่าของการควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพแนวโน้มนี้สอดคล้องกับผลลัพธ์ของการต้านทานโพลาไรเซชัน
EIS เป็นอีกวิธีหนึ่งที่ไม่ทำลายซึ่งใช้ในการระบุลักษณะปฏิกิริยาเคมีไฟฟ้าที่ส่วนต่อการกัดกร่อน34การคำนวณสเปกตรัมอิมพีแดนซ์และความจุของแถบที่สัมผัสกับสื่อที่ไม่มีชีวิตและสารละลายของ Pseudomonas aeruginosa, Rb คือความต้านทานของฟิล์มพาสซีฟ/ไบโอฟิล์มที่เกิดขึ้นบนพื้นผิวของแถบ, Rct คือความต้านทานการถ่ายโอนประจุ, Cdl คือชั้นไฟฟ้าสองชั้น) และพารามิเตอร์องค์ประกอบเฟสคงที่ (CPE) ของ QCPEพารามิเตอร์เหล่านี้ได้รับการวิเคราะห์เพิ่มเติมโดยการเปรียบเทียบข้อมูลกับแบบจำลองวงจรไฟฟ้าที่เทียบเท่า (EEC)
บนรูปรูปที่ 3 แสดงแปลง Nyquist ทั่วไป ( a และ b ) และแปลง Bode ( a ' และ b ') ของตัวอย่าง HDSS 2,707 ตัวอย่างในสื่อที่ไม่มีชีวิตและน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa ในเวลาฟักตัวต่างๆเมื่อมี Pseudomonas aeruginosa เส้นผ่านศูนย์กลางของห่วง Nyquist จะลดลงแผนภาพ Bode (รูปที่ 3b') แสดงการเพิ่มขึ้นของความต้านทานรวมข้อมูลเกี่ยวกับค่าคงที่เวลาผ่อนคลายสามารถหาได้จากเฟสสูงสุดบนรูปรูปที่ 4 แสดงโครงสร้างทางกายภาพและ EEC ที่สอดคล้องกันโดยอิงจากชั้นเดียว (a) และสองชั้น (b)CPE ได้รับการแนะนำในโมเดล EECการรับเข้าและความต้านทานของมันแสดงดังต่อไปนี้:
แบบจำลองทางกายภาพสองแบบและวงจรที่เทียบเท่ากันสำหรับการปรับสเปกตรัมความต้านทานคูปอง HDSS 2707:
โดยที่ Y0 คือขนาดของ CPE, j คือจำนวนจินตภาพหรือ (−1)1/2, ω คือความถี่เชิงมุม และ n คือตัวประกอบกำลังของ CPE ที่น้อยกว่า 135การผกผันของความต้านทานการถ่ายโอนประจุ (เช่น 1/Rct) สอดคล้องกับอัตราการกัดกร่อนค่า Rct ที่ต่ำกว่าหมายถึงอัตราการกัดกร่อนที่สูงขึ้น27หลังจากการฟักตัวเป็นเวลา 14 วัน Rct ของตัวอย่างทดสอบของ Pseudomonas aeruginosa มีค่าถึง 32 kΩ cm2 ซึ่งน้อยกว่า 489 kΩ cm2 ของตัวอย่างทดสอบที่ไม่ใช่ทางชีวภาพมาก (ตารางที่ 4)
รูปภาพ CLSM และรูปภาพ SEM ในรูป5 แสดงให้เห็นอย่างชัดเจนว่าการครอบคลุมแผ่นชีวะบนพื้นผิวของตัวอย่าง HDSS 2707 มีความหนาแน่นมากหลังจากผ่านไป 7 วันอย่างไรก็ตาม หลังจากผ่านไป 14 วัน การเคลือบไบโอฟิล์มก็เบาบางและมีเซลล์ที่ตายแล้วบางส่วนปรากฏขึ้นตารางที่ 5 แสดงความหนาของแผ่นชีวะของตัวอย่าง HDSS 2707 ตัวอย่าง หลังจากสัมผัสกับเชื้อ Pseudomonas aeruginosa เป็นเวลา 7 และ 14 วันความหนาฟิล์มชีวะสูงสุดเปลี่ยนจาก 23.4 µm หลังจาก 7 วันเป็น 18.9 µm หลังจาก 14 วันความหนาเฉลี่ยของแผ่นชีวะก็ยืนยันแนวโน้มนี้เช่นกันลดลงจาก 22.2 ± 0.7 μm หลังจาก 7 วัน เป็น 17.8 ± 1.0 μm หลังจาก 14 วัน
(a) ภาพ CLSM สามมิติที่ 7 วัน (b) ภาพ CLSM 3 มิติที่ 14 วัน (c) ภาพ SEM ที่ 7 วัน และ (d) ภาพ SEM ที่ 14 วัน
EMF เปิดเผยองค์ประกอบทางเคมีในฟิล์มชีวะและผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนในตัวอย่างที่สัมผัสกับ Pseudomonas aeruginosa เป็นเวลา 14 วันบนรูปรูปที่ 6 แสดงให้เห็นว่าปริมาณของ C, N, O, P ในฟิล์มชีวภาพและผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนนั้นสูงกว่าในโลหะบริสุทธิ์มาก เนื่องจากองค์ประกอบเหล่านี้เกี่ยวข้องกับฟิล์มชีวภาพและสารเมตาบอไลต์ของมันจุลินทรีย์ต้องการเพียงปริมาณ Cr และ Fe เท่านั้นปริมาณ Cr และ Fe ที่มีปริมาณสูงในแผ่นชีวะและผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนบนพื้นผิวของตัวอย่างบ่งชี้ถึงการสูญเสียองค์ประกอบในเมทริกซ์โลหะอันเป็นผลมาจากการกัดกร่อน
หลังจากผ่านไป 14 วัน หลุมที่มีและไม่มี P. aeruginosa ถูกสังเกตพบในตัวกลาง 2216Eก่อนการฟักตัว พื้นผิวของตัวอย่างจะเรียบและไม่มีข้อบกพร่อง (รูปที่ 7a)หลังจากการฟักตัวและการกำจัดฟิล์มชีวะและผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อน ตรวจสอบหลุมที่ลึกที่สุดบนพื้นผิวของตัวอย่างโดยใช้ CLSM ดังแสดงในรูปที่ 7b และ cไม่พบรูพรุนที่ชัดเจนบนพื้นผิวของสารควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ (ความลึกของหลุมสูงสุด 0.02 µm)ความลึกของหลุมสูงสุดที่เกิดจากเชื้อ Pseudomonas aeruginosa คือ 0.52 µm หลังจาก 7 วัน และ 0.69 µm หลังจาก 14 วัน โดยอิงตามความลึกของหลุมสูงสุดโดยเฉลี่ยจาก 3 ตัวอย่าง (เลือกความลึกของหลุมสูงสุด 10 หลุมสำหรับแต่ละตัวอย่าง) และถึง 0.42 ± 0.12 µm .และ 0.52 ± 0.15 µm ตามลำดับ (ตารางที่ 5)ค่าความลึกของลักยิ้มเหล่านี้มีขนาดเล็กแต่มีความสำคัญ
(ก) ก่อนการสัมผัส;(b) 14 วันในสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิต(c) 14 วันในน้ำซุป P. aeruginosa
บนรูปตารางที่ 8 แสดงสเปกตรัม XPS ของพื้นผิวตัวอย่างต่างๆ และเคมีที่วิเคราะห์สำหรับแต่ละพื้นผิวสรุปไว้ในตารางที่ 6 ในตารางที่ 6 เปอร์เซ็นต์อะตอมของ Fe และ Cr ต่ำกว่ามากเมื่อมี P. aeruginosa (ตัวอย่าง A และ B ) มากกว่าในแถบควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ(ตัวอย่าง C และ D)สำหรับตัวอย่างของ Pseudomonas aeruginosa กราฟสเปกตรัมระดับแกนกลาง Cr 2p ถูกปรับให้เข้ากับองค์ประกอบพีคสี่องค์ประกอบที่มีพลังงานการจับ (BE) อยู่ที่ 574.4, 576.6, 578.3 และ 586.8 eV ซึ่งถูกกำหนดให้เป็น Cr, Cr2O3, CrO3 และ Cr(OH) 3 ตามลำดับ (รูปที่ 9a และ b)สำหรับตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ สเปกตรัมของระดับแกนกลาง Cr 2p ในรูปที่9c และ d มีพีคหลักสองค่าคือ Cr (BE 573.80 eV) และ Cr2O3 (BE 575.90 eV) ตามลำดับความแตกต่างที่ชัดเจนที่สุดระหว่างคูปอง abiotic และคูปอง P. aeruginosa คือการมี Cr6+ และมีสัดส่วนที่ค่อนข้างสูงของ Cr(OH)3 (BE 586.8 eV) ใต้แผ่นชีวะ
สเปกตรัม XPS ที่มีพื้นผิวกว้างของตัวอย่าง HDSS 2707 ตัวอย่างในสื่อกลางสองชนิดเป็นเวลา 7 และ 14 วัน ตามลำดับ
(a) การสัมผัสกับ P. aeruginosa เป็นเวลา 7 วัน (b) การสัมผัสกับ P. aeruginosa เป็นเวลา 14 วัน (c) การสัมผัสกับสิ่งไม่มีชีวิตเป็นเวลา 7 วัน (d) การสัมผัสกับสิ่งไม่มีชีวิตเป็นเวลา 14 วัน
HDSS มีความต้านทานการกัดกร่อนในระดับสูงในสภาพแวดล้อมส่วนใหญ่Kim และคณะ รายงานว่า HDSS UNS S32707 ถูกระบุว่าเป็น DSS ที่มีสารเจือสูงโดยมีค่า PREN มากกว่า 45 ค่า PREN ของตัวอย่าง HDSS 2707 ในงานนี้คือ 49 เนื่องจากเนื้อหา Cr สูงและระดับ Mo และระดับสูง Ni ซึ่งมีประโยชน์ในสภาพแวดล้อมที่เป็นกรดและสภาพแวดล้อมที่มีคลอไรด์ในปริมาณสูงนอกจากนี้ องค์ประกอบที่มีความสมดุลและโครงสร้างจุลภาคที่ปราศจากข้อบกพร่องยังให้ความเสถียรของโครงสร้างและความต้านทานการกัดกร่อนแม้จะมีความทนทานต่อสารเคมีที่ดีเยี่ยม แต่ข้อมูลการทดลองในงานนี้แสดงให้เห็นว่า 2707 HDSS ไม่สามารถต้านทานต่อ MIC ของฟิล์มชีวะ Pseudomonas aeruginosa ได้อย่างสมบูรณ์
ผลลัพธ์ทางเคมีไฟฟ้าแสดงให้เห็นว่าอัตราการกัดกร่อนของ 2707 HDSS ในน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญหลังจากผ่านไป 14 วัน เมื่อเทียบกับสภาพแวดล้อมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพในรูปที่ 2a พบว่า Eocp ลดลงทั้งในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีชีวิตและในน้ำซุป P. aeruginosa ในช่วง 24 ชั่วโมงแรกหลังจากนั้น แผ่นชีวะจะปกคลุมพื้นผิวของตัวอย่างจนเสร็จสิ้น และ Eocp จะค่อนข้างเสถียรอย่างไรก็ตาม ระดับ Eocp ทางชีวภาพนั้นสูงกว่าระดับ Eocp ที่ไม่มีชีวิตมากมีเหตุผลที่เชื่อได้ว่าความแตกต่างนี้เกี่ยวข้องกับการก่อตัวของแผ่นชีวะของ P. aeruginosaบนรูป2g ค่า icorr ของ 2707 HDSS ไปถึง 0.627 µA cm-2 ต่อหน้า Pseudomonas aeruginosa ซึ่งเป็นลำดับความสำคัญที่สูงกว่าค่าของการควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ (0.063 µA cm-2) ซึ่งสอดคล้องกับ Rct ค่าที่วัดโดย EISในช่วงสองสามวันแรก ค่าความต้านทานในน้ำซุป P. aeruginosa เพิ่มขึ้นเนื่องจากการเกาะติดของเซลล์ P. aeruginosa และการสร้างฟิล์มชีวะอย่างไรก็ตาม ความต้านทานจะลดลงเมื่อแผ่นชีวะครอบคลุมพื้นผิวตัวอย่างโดยสมบูรณ์ชั้นป้องกันถูกโจมตีเป็นหลักเนื่องจากการก่อตัวของแผ่นชีวะและสารเมตาโบไลต์ของแผ่นชีวะดังนั้นความต้านทานการกัดกร่อนจะลดลงเมื่อเวลาผ่านไป และการสะสมของ Pseudomonas aeruginosa ทำให้เกิดการกัดกร่อนเฉพาะจุดแนวโน้มของสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิตนั้นแตกต่างกันความต้านทานการกัดกร่อนของการควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพสูงกว่าค่าที่สอดคล้องกันของตัวอย่างที่สัมผัสกับน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa มากนอกจากนี้ สำหรับตัวอย่างที่ไม่มีสิ่งมีชีวิต ค่า Rct 2707 HDSS สูงถึง 489 kΩ cm2 ในวันที่ 14 ซึ่งสูงกว่าการมีอยู่ของ Pseudomonas aeruginosa (32 kΩ cm2) ถึง 15 เท่าดังนั้น 2707 HDSS จึงมีความต้านทานการกัดกร่อนที่ดีเยี่ยมในสภาพแวดล้อมที่ปลอดเชื้อ แต่ไม่ได้รับการปกป้องจากการโจมตีของ MIC ด้วยฟิล์มชีวะ Pseudomonas aeruginosa
ผลลัพธ์เหล่านี้สามารถสังเกตได้จากเส้นโค้งโพลาไรเซชันในรูปที่2b.การแตกกิ่งขั้วบวกสัมพันธ์กับการสร้างฟิล์มชีวะของ Pseudomonas aeruginosa และปฏิกิริยาออกซิเดชันของโลหะในขณะเดียวกันปฏิกิริยาแคโทดิกก็คือการลดออกซิเจนการมีอยู่ของ P. aeruginosa ช่วยเพิ่มความหนาแน่นกระแสการกัดกร่อนอย่างมีนัยสำคัญ ซึ่งสูงกว่าการควบคุมแบบไม่ใช้ชีวะประมาณลำดับความสำคัญสิ่งนี้บ่งชี้ว่าฟิล์มชีวะของ Pseudomonas aeruginosa เพิ่มการกัดกร่อนเฉพาะจุดของ 2707 HDSSหยวน และคณะ พบว่าความหนาแน่นกระแสการกัดกร่อนของโลหะผสม Cu-Ni 70/30 เพิ่มขึ้นโดยฟิล์มชีวะ Pseudomonas aeruginosaอาจเกิดจากการเร่งปฏิกิริยาทางชีวภาพของการลดออกซิเจนโดยฟิล์มชีวะ Pseudomonas aeruginosaการสังเกตนี้อาจอธิบาย MIC 2707 HDSS ในงานนี้ด้วยแผ่นชีวะแอโรบิกยังสามารถลดปริมาณออกซิเจนที่อยู่ข้างใต้ได้ดังนั้นการปฏิเสธที่จะคืนพื้นผิวโลหะด้วยออกซิเจนอาจเป็นปัจจัยที่มีส่วนทำให้ MIC ในงานนี้
ดิกคินสันและคณะ38 แนะนำว่าอัตราของปฏิกิริยาเคมีและไฟฟ้าเคมีโดยตรงขึ้นอยู่กับกิจกรรมเมตาบอลิซึมของแบคทีเรียที่ติดอยู่กับพื้นผิวตัวอย่างและธรรมชาติของผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนดังที่แสดงในรูปที่ 5 และตารางที่ 5 จำนวนเซลล์และความหนาของฟิล์มชีวะลดลงหลังจาก 14 วันสิ่งนี้สามารถอธิบายได้อย่างสมเหตุสมผลด้วยข้อเท็จจริงที่ว่าหลังจากผ่านไป 14 วัน เซลล์ที่ยึดไว้ส่วนใหญ่บนพื้นผิว 2707 HDSS เสียชีวิตเนื่องจากสารอาหารในตัวกลาง 2216E หมดไป หรือการปล่อยไอออนของโลหะที่เป็นพิษออกจากเมทริกซ์ 2707 HDSSนี่เป็นข้อจำกัดของการทดสอบแบบกลุ่ม
ในงานนี้ แผ่นชีวะของ Pseudomonas aeruginosa ส่งเสริมการลดลงของ Cr และ Fe ในท้องถิ่นภายใต้แผ่นชีวะบนพื้นผิวของ 2707 HDSS (รูปที่ 6)ในตารางที่ 6 Fe และ Cr ลดลงในกลุ่มตัวอย่าง D เมื่อเปรียบเทียบกับตัวอย่าง C ซึ่งบ่งชี้ว่าการละลายของ Fe และ Cr ที่เกิดจากฟิล์มชีวะของ P. aeruginosa นั้นได้รับการดูแลหลังจาก 7 วันแรกสภาพแวดล้อม 2216E ใช้เพื่อจำลองสภาพแวดล้อมทางทะเลประกอบด้วย Cl- 17,700 ppm ซึ่งเทียบได้กับเนื้อหาในน้ำทะเลธรรมชาติการมีอยู่ของ 17,700 ppm Cl- เป็นสาเหตุหลักที่ทำให้ Cr ลดลงในตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีววิทยา 7 วันและ 14 วันที่วิเคราะห์โดย XPSเมื่อเปรียบเทียบกับตัวอย่างทดสอบของ Pseudomonas aeruginosa การละลายของ Cr ในตัวอย่างทดสอบแบบไม่มีชีวะจะน้อยกว่ามาก เนื่องจากความต้านทานที่แข็งแกร่งของ 2707 HDSS ต่อคลอรีนในสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิตบนรูป9 แสดงการมีอยู่ของ Cr6+ ในภาพยนตร์ที่สร้างฟิล์มสิ่งนี้อาจเกี่ยวข้องกับการกำจัด Cr ออกจากพื้นผิวเหล็กโดยแผ่นชีวะของ P. aeruginosa ตามที่ Chen และ Clayton แนะนำ
เนื่องจากการเจริญเติบโตของแบคทีเรีย ค่า pH ของตัวกลางก่อนและหลังการฟักตัวคือ 7.4 และ 8.2 ตามลำดับดังนั้นการกัดกร่อนของกรดอินทรีย์ไม่น่าจะมีส่วนช่วยในงานนี้ภายใต้แผ่นชีวะของ P. aeruginosa เนื่องจากค่า pH ค่อนข้างสูงในตัวกลางจำนวนมากpH ของตัวกลางควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพไม่เปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญ (จาก 7.4 เริ่มต้นไปจนถึง 7.5 สุดท้าย) ในระหว่างช่วงการทดสอบ 14 วันการเพิ่มขึ้นของ pH ในอาหารเลี้ยงเชื้อหลังการฟักตัวมีความสัมพันธ์กับกิจกรรมการเผาผลาญของ Pseudomonas aeruginosa และพบผลแบบเดียวกันต่อ pH ในกรณีที่ไม่มีแถบทดสอบ
ดังแสดงในรูปในรูปที่ 7 ความลึกของหลุมสูงสุดที่เกิดจากฟิล์มชีวะของ Pseudomonas aeruginosa คือ 0.69 µm ซึ่งมากกว่าในตัวกลางที่ไม่มีชีวิตอย่างมีนัยสำคัญ (0.02 µm)ซึ่งสอดคล้องกับข้อมูลเคมีไฟฟ้าข้างต้นภายใต้เงื่อนไขเดียวกัน ความลึกของหลุมที่ 0.69 µm จะน้อยกว่าค่า 9.5 µm ที่ระบุไว้สำหรับ 2205 DSS40 มากกว่าสิบเท่าข้อมูลเหล่านี้แสดงให้เห็นว่า 2707 HDSS มีความต้านทานต่อ MIC ได้ดีกว่า 2205 DSSสิ่งนี้ไม่น่าแปลกใจเนื่องจาก 2707 HDSS มีระดับ Cr ที่สูงกว่า ซึ่งช่วยให้เกิดฟิล์มได้นานขึ้น ทำให้ Pseudomonas aeruginosa สลายไขมันได้ยากขึ้น และเริ่มกระบวนการโดยไม่มีการตกตะกอน Pitting ที่เป็นอันตราย
โดยสรุป พบ MIC pitting บนพื้นผิว HDSS 2707 ในน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa ในขณะที่ pitting ไม่มีนัยสำคัญในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีชีวิตงานนี้แสดงให้เห็นว่า 2707 HDSS มีความต้านทานต่อ MIC ได้ดีกว่า 2205 DSS แต่ไม่สามารถต้านทาน MIC ได้อย่างสมบูรณ์เนื่องจากฟิล์มชีวะ Pseudomonas aeruginosaผลลัพธ์เหล่านี้ช่วยในการเลือกสเตนเลสสตีลที่เหมาะสมและอายุขัยสำหรับสภาพแวดล้อมทางทะเล
ตัวอย่าง HDSS 2707 จัดทำโดย School of Metallurgy, Northeastern University (NEU), Shenyang, Chinaองค์ประกอบองค์ประกอบของ 2707 HDSS แสดงไว้ในตารางที่ 1 ซึ่งวิเคราะห์โดยฝ่ายวิเคราะห์และทดสอบวัสดุ มหาวิทยาลัยนอร์ทอีสเทิร์นตัวอย่างทั้งหมดได้รับการบำบัดด้วยสารละลายของแข็งที่ 1180°C เป็นเวลา 1 ชั่วโมงก่อนการทดสอบการกัดกร่อน เหล็กเหรียญ HDSS 2707 ที่มีพื้นที่ผิวสัมผัส 1 cm2 ได้รับการขัดให้เป็น 2000 กรวดด้วยกระดาษทรายซิลิคอนคาร์ไบด์ จากนั้นขัดเพิ่มเติมด้วยสารละลายผง Al2O3 0.05 µmด้านข้างและด้านล่างได้รับการปกป้องด้วยสีเฉื่อยหลังจากการอบแห้ง ตัวอย่างถูกล้างด้วยน้ำปราศจากไอออนและฆ่าเชื้อด้วยเอทานอล 75% (ปริมาตร/ปริมาตร) เป็นเวลา 0.5 ชั่วโมงจากนั้นนำไปตากให้แห้งด้วยแสงอัลตราไวโอเลต (UV) เป็นเวลา 0.5 ชั่วโมงก่อนใช้งาน
ซื้อสายพันธุ์ทะเล Pseudomonas aeruginosa MCCC 1A00099 จาก Xiamen Marine Culture Collection (MCCC) ประเทศจีนอาหารเหลวมารีน 2216E (Qingdao Hope Biotechnology Co., Ltd., ชิงเต่า, จีน) ถูกนำมาใช้ในการเพาะเลี้ยง Pseudomonas aeruginosa ในขวดขนาด 250 มล. และเซลล์แก้วไฟฟ้าเคมี 500 มล. ภายใต้สภาวะแอโรบิกที่อุณหภูมิ 37 ° Cสื่อประกอบด้วย (กรัม/ลิตร): 19.45 NaCl, 5.98 MgCl2, 3.24 Na2SO4, 1.8 CaCl2, 0.55 KCl, 0.16 Na2CO3, 0.08 KBr, 0.034 SrCl2, 0.08 SrBr2 , 0.022 H3BO3, 0.004 NaSiO3, 0.008 , 0.008 Na4F0H20PO.สารสกัดยีสต์ 1.0 และธาตุเหล็กซิเตรต 0.1นึ่งฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 121 °C เป็นเวลา 20 นาทีก่อนทำการเพาะเชื้อเซลล์นั่งและแพลงก์ตอนถูกนับภายใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงโดยใช้ฮีโมไซโตมิเตอร์ที่กำลังขยาย 400 เท่าความเข้มข้นเริ่มต้นของเซลล์แพลงก์โทนิก P. aeruginosa ทันทีหลังการฉีดวัคซีนคือประมาณ 106 เซลล์/มล.
การทดสอบเคมีไฟฟ้าดำเนินการในเซลล์แก้วสามขั้วแบบคลาสสิกซึ่งมีปริมาตรปานกลาง 500 มล.แผ่นแพลตตินัมและอิเล็กโทรดคาโลเมลอิ่มตัว (SCE) เชื่อมต่อกับเครื่องปฏิกรณ์ผ่านเส้นเลือดฝอย Luggin ที่เติมด้วยสะพานเกลือ และทำหน้าที่เป็นอิเล็กโทรดตัวนับและอิเล็กโทรดอ้างอิงตามลำดับในการสร้างอิเล็กโทรดใช้งานนั้น ให้ติดลวดทองแดงเคลือบยางเข้ากับแต่ละตัวอย่างและเคลือบด้วยอีพอกซี โดยเหลือพื้นที่ผิวด้านหนึ่งไว้ประมาณ 1 ซม. 2 สำหรับอิเล็กโทรดทำงานในระหว่างการตรวจวัดเคมีไฟฟ้า ตัวอย่างจะถูกวางในตัวกลาง 2216E และเก็บไว้ที่อุณหภูมิการฟักตัวคงที่ (37°C) ในอ่างน้ำOCP, LPR, EIS และข้อมูลโพลาไรซ์ไดนามิกที่เป็นไปได้ถูกวัดโดยใช้โพเทนชิโอสแตต Autolab (อ้างอิง 600TM, Gamry Instruments, Inc., USA)การทดสอบ LPR ได้รับการบันทึกที่อัตราการสแกนที่ 0.125 มิลลิโวลต์ s-1 ในช่วง -5 และ 5 มิลลิโวลต์ และ Eocp ด้วยอัตราการสุ่มตัวอย่างที่ 1 เฮิร์ตซ์EIS ถูกดำเนินการที่ Eocp ในสภาวะคงตัวโดยใช้แรงดันไฟฟ้าที่ใช้ 5 มิลลิโวลต์ โดยมีไซนูซอยด์ในช่วงความถี่ 0.01 ถึง 10,000 เฮิรตซ์ก่อนการกวาดล้างที่อาจเกิดขึ้น อิเล็กโทรดอยู่ในโหมดวงจรเปิดจนกระทั่งถึงศักยภาพในการกัดกร่อนอิสระที่เสถียรที่ 42กับ.การทดสอบแต่ละครั้งทำซ้ำสามครั้งโดยมีและไม่มี Pseudomonas aeruginosa
ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ทางโลหะวิทยาได้รับการขัดเงาด้วยกลไกด้วยกระดาษ SiC เปียก 2000 กรวด จากนั้นขัดด้วยสารละลายผง Al2O3 0.05 µm เพื่อการสังเกตการณ์ด้วยแสงการวิเคราะห์ทางโลหะวิทยาดำเนินการโดยใช้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงตัวอย่างถูกสลักด้วยสารละลายโพแทสเซียมไฮดรอกไซด์ 10 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนัก43
หลังจากการฟักไข่ ให้ล้าง 3 ครั้งด้วยน้ำเกลือบัฟเฟอร์ฟอสเฟต (PBS) (pH 7.4 ± 0.2) จากนั้นแก้ไขด้วยกลูตาราลดีไฮด์ 2.5% (ปริมาตร/ปริมาตร) เป็นเวลา 10 ชั่วโมงเพื่อยึดฟิล์มชีวะการทำแห้งครั้งต่อไปด้วยเอธานอลตามลำดับ (50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95% และ 100% โดยปริมาตร) ก่อนการอบแห้งด้วยอากาศสุดท้าย ฟิล์มทองคำถูกสปัตเตอร์ลงบนพื้นผิวของตัวอย่างเพื่อให้เกิดการนำไฟฟ้าสำหรับการสังเกต SEM44ภาพ SEM จะเน้นไปที่ตำแหน่งที่มีเซลล์ P. aeruginosa ที่จัดตั้งขึ้นมากที่สุดบนพื้นผิวของแต่ละตัวอย่างทำการวิเคราะห์ EMF เพื่อตรวจจับองค์ประกอบทางเคมีในการวัดความลึกของหลุม ให้ใช้กล้องจุลทรรศน์เลเซอร์สแกนคอนโฟคอล Zeiss (CLSM) (LSM 710, Zeiss, ประเทศเยอรมนี)เพื่อสังเกตหลุมการกัดกร่อนใต้แผ่นชีวะ ตัวอย่างทดสอบจะถูกทำความสะอาดเป็นครั้งแรกตามมาตรฐานแห่งชาติของจีน (CNS) GB/T4334.4-2000 เพื่อกำจัดผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนและแผ่นชีวะออกจากพื้นผิวของตัวอย่างทดสอบ
การวิเคราะห์ด้วยรังสีเอกซ์โฟโตอิเล็กตรอนสเปกโทรสโกปี (XPS, ESCALAB250 Surface Analysis System, Thermo VG, USA) โดยใช้แหล่งกำเนิดรังสีเอกซ์แบบเอกรงค์เดียว (เส้น Al Kα ที่มีพลังงาน 1,500 eV และกำลัง 150 W) ในพลังงานยึดเหนี่ยวที่หลากหลาย 0 ต่ำกว่าเงื่อนไขมาตรฐาน –1350 eVบันทึกสเปกตรัมความละเอียดสูงโดยใช้พลังงานส่งผ่าน 50 eV และขนาดสเต็ป 0.2 eV
นำตัวอย่างที่ฟักออกมาออก และค่อยๆ ล้างด้วย PBS (pH 7.4 ± 0.2) เป็นเวลา 15 วินาที45เพื่อสังเกตความมีชีวิตของแบคทีเรียของแผ่นชีวะบนตัวอย่าง แผ่นชีวะถูกย้อมโดยใช้ชุดความมีชีวิตของแบคทีเรีย BacLight LIVE/DEAD (Invitrogen, Eugene, OR, USA)ชุดประกอบด้วยสีย้อมฟลูออเรสเซนต์ 2 สี: สีย้อมฟลูออเรสเซนต์สีเขียว SYTO-9 และสีย้อมฟลูออเรสเซนต์โพรพิเดียมไอโอไดด์ (PI) สีแดงใน CLSM จุดเรืองแสงสีเขียวและสีแดงแสดงถึงเซลล์ที่มีชีวิตและเซลล์ที่ตายแล้วตามลำดับสำหรับการย้อมสี ให้บ่มส่วนผสม 1 มิลลิลิตรที่ประกอบด้วย SYTO-9 3 µl และสารละลาย PI 3 µl ที่อุณหภูมิห้อง (23°C) ในที่มืดเป็นเวลา 20 นาทีหลังจากนั้น ตัวอย่างที่เปื้อนจะถูกสังเกตที่ความยาวคลื่นสองช่วง (488 นาโนเมตรสำหรับเซลล์ที่มีชีวิตและ 559 นาโนเมตรสำหรับเซลล์ที่ตายแล้ว) โดยใช้อุปกรณ์ Nikon CLSM (C2 Plus, Nikon, ญี่ปุ่น)วัดความหนาของแผ่นชีวะในโหมดสแกน 3 มิติ
วิธีอ้างอิงบทความนี้: Li, H. และคณะผลของฟิล์มชีวะทางทะเล Pseudomonas aeruginosa ต่อการกัดกร่อนของจุลินทรีย์ในเหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์ 2707ศาสตร์.บ้าน 6, 20190;ดอย:10.1038/srep20190 (2016)
Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. การแตกร้าวของการกัดกร่อนจากความเครียดของเหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ LDX 2101 ในสารละลายคลอไรด์เมื่อมีไธโอซัลเฟตการกัดกร่อนวิทยาศาสตร์.80, 205–212 (2014)
Kim, ST, Jang, SH, Lee, IS และ Park, YS ผลของการบำบัดความร้อนด้วยสารละลายและไนโตรเจนในก๊าซป้องกันต่อความต้านทานการกัดกร่อนแบบรูพรุนของการเชื่อมเหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์การกัดกร่อนวิทยาศาสตร์.53, 1939–1947 (2011)
Shi, X., Avchi, R., Geyser, M. และ Lewandowski, Z. การศึกษาเปรียบเทียบทางเคมีของรูจุลินทรีย์และเคมีไฟฟ้าในสแตนเลส 316Lการกัดกร่อนวิทยาศาสตร์.45, 2577–2595 (2546)
Luo H., Dong KF, Li HG และ Xiao K. พฤติกรรมเคมีไฟฟ้าของเหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ 2205 ในสารละลายอัลคาไลน์ที่ค่า pH ต่างๆ เมื่อมีคลอไรด์เคมีไฟฟ้าวารสาร.64, 211–220 (2012)
เวลาโพสต์: Jan-09-2023